برای تایید انجام کارهای مهندسی ژنتیک با ید تغییراتی که روی DNA ایجاد شده است رویت گردند، مشاهده DNA متعافب الکتروفورز روی ژل آگارز یا پلی آکریلامید و رنگ آمیزی با اتیدیوم بروماید امکان پذیر خواهد بود. برای انتخاب درصد آگارز از جدول شماره ۱ استفاده میشود:
جدول شماره ۱ - قدرت جداسازی مولکولهای DNA توسط غلظتهای مختلف آگارز
درصد آگارز |
قدرت جداسازی DNA |
3 |
100-1000bp |
2 |
200- 1500bp |
1.5 |
300- 3000bp |
1 |
500 – 5000bp |
0.8 |
1000- 7000bp |
0.6 |
10 – 30kbp |
0.4 |
30 – 50kbp |
12- تهیه ژل آگارز
1- قالب ژل را آماده کنید
2- شانه ای با دنده های مناسب روی قالب قراردهید
3- حجم ژل مورد نظر را تعیین کنید ( اندازه گیری طول وعرض قالب و قطر ژل مورد نظر )
4- پودر آگارز را وزن کنید
5- آگارز را در بافر 1xTBE حل کنید و آن را حرارت داده تا خوب بجوشد و قبل از خنک شدن به ازای هر 10 میلی لیترژل یک میکرولیتر از محلول 10mg/ml اتیدیوم بروماید اضافه کنید سپس آن را خوب مخلوط کرده و داخل قالب بریزید
1xTBE= 89mM Tris base, pH8, 89mM boric acid, 2.5mM EDTA, pH8
6- بعد از بسته شدن ژل آن را از قالب خارج کرده و داخل تانک الکتروفورز قرار دهید
7- هر 5 میکرولیترنمونه را با یک میکرولیتر بافر نمونه مخلوط کرده و داخل چاهک های ژل بریزید (این بافر حاوی 50درصد ماده سنگین کننده مانند گلیسرین یا ساکارز است که نمونه بخوبی داخل چاهک ریخته میشود و همچنین حاوی0.2 درصد از یک رنگ نشانه مانند بروموفنل بلو یا گزیلن سیانول میباشد . رنگ برومو فنل بلودر ژل 1.5 درصد همراه با 500bp و درژل 0.8 درصد با 1000bpحرکت میکند )
جدول شماره ۲ : مقایسه حرکت رنگ نشانه و مارکر DNA روی ژل آگارز
درصد ژل آگارز |
حرکت تقریبی رنگ نشانه در مقایسه با مارکر |
حرکت تقریبی DNA در مقایسه با مارکر | |
برومو فنل بلو |
Xylen cyanol | ||
0.4 |
500bp |
3 kbp |
2.5 kbp |
0.8 |
500 bp |
3 kbp |
1kbp |
1 |
500bp |
3 kbp |
500 bp |
1.25 |
500 bp |
3 kbp |
250bp |
1.5 |
100bp |
1kbp |
250bp |
2 |
100bp |
1kbp |
100bp |
جدول شماره ۳ : مقایسه حرکت رنگ نشانه و مارکر DNA روی ژل پلی آکریلا مید
درصد ژل پلی آکریلامید |
حرکت تقریبی رنگ نشانه در مقایسه با مارکر |
حرکت تقریبی DNA در مقایسه با مارکر | |
برومو فنل بلو |
Xylen cyanol | ||
3.5 |
100bp |
500 bp |
100 bp |
5 |
75bp |
250bp |
75bp |
8 |
50bp |
250bp |
50 bp |
12 |
25bp |
75bp |
25bp |
15 |
10bp |
60bp |
25bp |
20 |
10bp |
60bp |
5bp |
8.- بافر تانک باید کاملا" روی ژل را بپوشاند و نمونه ها از داخل بافردرون چاهک ها ریخته شوند. (از بافرهای مختلف استفاده میگردد. بهتر است هنگام الکتروفورز به ازای هر میلی لیتر بافر تانک (TBE buffer) یک میکرو لیتر از اتیدیوم بروماید 10mg/ml اضافه شود.
9- DNA دارای شارژ منفی است و برای الکتروفورز شدن باید نمونه بطرف قطب منفی با شد تا هنگام الکترو فورز به سمت قطب مثبت حرکت کند
10- تانک الکتروفورز را به منبع تغذیه وصل کنید
11- پیچ Current را روی ماکزیمم قرار داده و ولتاژ را تنظیم کنید (10V/centimetr )
وقتی رنگ نشانه سه چهارم طول ژل را طی کرد ژل را از تانک خارج کرده بانورUV نتیجه را مشاهده کنید .